細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):1.取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。此項(xiàng)尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時(shí)凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致炸列。2.凍存液的問題:凍存液的配置已是常識,在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對細(xì)胞不是完全無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對細(xì)胞的毒副作較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)蘇溫度太慢,會(huì)造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3.離心前須加入少量培養(yǎng)液。細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對細(xì)胞的損傷。無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品特色:可微量,原位凍存,例如雜交瘤細(xì)胞的凍存,省時(shí)高效。南昌無血清細(xì)胞凍存液直銷價(jià)
細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來,這樣在需要的時(shí)候再復(fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。而且適度地保存一定量的細(xì)胞,可以防止因正在培養(yǎng)的細(xì)胞被污染或其他意外事件而使細(xì)胞丟種,起到了細(xì)胞保種的作用。為什么要進(jìn)行細(xì)胞凍存?連續(xù)培養(yǎng)的細(xì)胞系容易發(fā)生遺傳漂變,有限細(xì)胞系較終會(huì)發(fā)生衰老,所有培養(yǎng)的細(xì)胞都易受到微生物污染,即使運(yùn)轉(zhuǎn)情況較好的實(shí)驗(yàn)室也會(huì)遇到設(shè)備故障的問題。由于已建立的細(xì)胞系是一種寶貴資源,更換細(xì)胞系成本高昂,而且耗費(fèi)時(shí)間,因此,十分有必要將細(xì)胞冷凍起來長期保存。除此之外,還可以利用細(xì)胞凍存的形式來購買、寄贈(zèng)、交換和運(yùn)送某些細(xì)胞。徐州貴陽無血清細(xì)胞凍存液無血清細(xì)胞凍存液的優(yōu)勢:通用型,適用于凍存各種細(xì)胞系、原代細(xì)胞。
冷凍速率:冷凍速率是指降溫的速度,直接關(guān)系到冷凍效果。冷凍速度不同,細(xì)胞內(nèi)水分向外流動(dòng)的情況也不相同,不同的冷凍速度既然能使細(xì)胞內(nèi)發(fā)生不同的生理變化,也可以對細(xì)胞產(chǎn)生不同的損傷。超快速玻璃化冷凍對細(xì)胞存活來說是較為理想的冷凍方法。細(xì)胞內(nèi)外呈玻璃化凝固,無冰晶形成或形成很小的冰晶,對細(xì)胞膜和細(xì)胞器不致造成損傷,細(xì)胞也不會(huì)在高濃度的溶質(zhì)中長時(shí)間暴露而受損。不同細(xì)胞的較適冷凍速率不同。小鼠骨髓干細(xì)胞、酵母、人紅細(xì)胞的較適冷凍速率分別為1.6℃/min、7℃/min和200℃/min。細(xì)胞與細(xì)胞之間的較適冷凍速率可在1.6℃~300℃/min,故對一種細(xì)胞進(jìn)行冷凍保存之前,首先需要測定其較適冷凍速率,以保證獲得較高的冷凍存活率。
細(xì)胞凍存和復(fù)蘇的原則:慢凍速融,這樣更加有利于保持細(xì)胞的活力。凍存細(xì)胞不加任何保護(hù)劑,會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)冰晶的產(chǎn)生,從而使細(xì)胞產(chǎn)生內(nèi)源性的機(jī)械損傷,引起細(xì)胞內(nèi)環(huán)境滲透壓,PH,電解質(zhì)等的改變,進(jìn)而促使細(xì)胞死亡。細(xì)胞凍存液除去蛋白酶,添加適量配置好的凍存細(xì)胞培養(yǎng)液.細(xì)胞培養(yǎng)的傳代及日常維持過程中,在培養(yǎng)器具、培養(yǎng)液及各種準(zhǔn)備工作方面都需大量的耗費(fèi),而且細(xì)胞一旦開始原代培養(yǎng),它的各種生物特性都將逐漸發(fā)生變化并隨著傳代次數(shù)的增加和體外環(huán)境條件的變化而不斷有新的變化。因此及時(shí)進(jìn)行細(xì)胞凍存十分必要。細(xì)胞冷凍儲存在-70℃冰箱中可以保存一年之久;細(xì)胞儲存在液氮中,溫度達(dá)-196℃,理論上儲存時(shí)間是無限的。程序降溫凍存技術(shù)要點(diǎn)是慢凍,標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1~-2/℃ min。
無血清細(xì)胞凍存液使用方法:選擇凍存處于對數(shù)生長期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1)按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2)按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。(參考:5×105至5×106cells/ml)。3)取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4)加入適量的無血清型細(xì)胞凍存液于離心管中,使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細(xì)胞混合液。5)將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6)直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃以下冰箱,長期冷凍保存。無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能:通常細(xì)胞凍存液的配方是由胎牛血清加上DMSO組成。深圳正規(guī)無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
無血清細(xì)胞凍存液,為多種保護(hù)劑組合。南昌無血清細(xì)胞凍存液直銷價(jià)
細(xì)胞凍存:取出凍存管,注明細(xì)胞名稱,代數(shù),日期。離心后,以無菌吸管吸棄上清,不要吸到底部的細(xì)胞沉淀。將細(xì)胞沉淀與凍存液充分混勻,根據(jù)計(jì)數(shù)結(jié)果,將細(xì)胞總數(shù)調(diào)節(jié)成細(xì)胞數(shù)量為5-10*105/ml為宜。將細(xì)胞凍存懸液分裝進(jìn)細(xì)胞凍存管中,一般2ml的凍存管中裝入1-1.5ml凍存液為宜。嚴(yán)密封口后,使用可控制降溫速度的冷凍裝置冷凍細(xì)胞,使溫度每分鐘大約降低1℃。或者,將裝有細(xì)胞的凍存管放入異丙的醇凍存盒中,然后將凍存盒置于–80℃條件下過夜。若無凍存盒及其他凍存裝置,可以先將凍存管置于4℃30min,再-20℃凍存1h直至完全冷凍,再轉(zhuǎn)移至-80℃冰箱過夜。第二天將已經(jīng)冷凍的細(xì)胞轉(zhuǎn)移到液氮容器中,置于液氮上方的氣相空間中儲存南昌無血清細(xì)胞凍存液直銷價(jià)
無血清細(xì)胞凍存液,細(xì)胞凍存與復(fù)蘇后,平均活細(xì)胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較,BI無血清凍存液細(xì)胞存活率都有較佳的表,BI無血清細(xì)胞凍存液也適用于動(dòng)物血清培養(yǎng)的細(xì)胞凍存。復(fù)蘇細(xì)胞:1.將細(xì)胞凍存管由液態(tài)氮中取出,置于37度水浴快速溶解回溫。此時(shí)可準(zhǔn)備培養(yǎng)基、無菌15ml離心管、培養(yǎng)瓶。2.于生物安全柜內(nèi),直接以少量培養(yǎng)基反復(fù)沖融,使細(xì)胞團(tuán)塊化凍。3.先在無菌15ml離心管中加入5ml培養(yǎng)基,再將化凍的細(xì)胞懸液加入離心管中。以200~300g,3分鐘離心收集細(xì)胞。4.倒去上清液,以新鮮培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,移到培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。5.隔天更換新鮮培養(yǎng)基,并觀察細(xì)胞存活狀況。細(xì)胞凍存管一定要保證完全密...