細胞凍存秘籍：細胞凍存對于大多數動物細胞，通常每分鐘下降-1至-3℃。控制冷卻過程的較好方法是使用程序降溫系統。如果沒有程序降溫系統，可以使用程序降溫盒，然后將其置于-70℃至-90℃冰箱中過夜。雖然這種方法適用于許多細胞系，但不能提供可控的，均勻的或可重復的冷卻，不建議用于珍貴細胞。無論使用哪種冷卻方法，重要的是快速高效地將其傳輸到較終存儲位置。如果轉移不能立即完成，可以將小瓶置于干冰上一段時間。這樣可以避免在轉移過程中發生溫度升高而損害細胞。在這個轉移過程中溫度升高是解凍后影響細胞活力的主要原因。清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。南京深圳無血清細胞凍存液

血清血液成分（加入抗凝劑）血液凝固析出的淡黃色透明液體。如將血液自血管內抽出，放入試管中，不加抗凝劑，則凝血反應，血液迅速凝固，形成膠凍。凝血塊收縮，其周圍所析出之淡黃色透明液體即為血清，也可于凝血后經離心取得。在凝血過程中，纖維蛋白原轉變成纖維蛋白塊，所以血清中無纖維蛋白原，這一點是與血漿比較大的區別。而在凝血反應中，血小板釋放出許多物質，各凝血因子也都發生了變化。這些成分都留在血清中并繼續發生變化，如凝血酶原變成凝血酶，并隨血清存放時間逐漸減少以至消失。這些也都是與血漿區別之處。但大量未參加凝血反應的物質則與血漿基本相同。為避免抗凝劑的干擾，血液中許多化學成分的分析，都以血清為樣品。溫州石家莊無血清細胞凍存液細胞凍存管一定要保證完全密封，否則在復蘇過程中有可能會炸。

細胞凍存液的操作步驟：1.配置含10%DMSO或凡士林、10～20%小牛血清的凍存細胞培養液;2.取對數成長期的體細胞，除去舊細胞培養液，用PBS清理。3.除去PBS，添加適量蛋白酶(遮蓋細胞培養皿表層)把單面生長發育的體細胞消化吸收出來;4.抽濾1000rpm，5min;5.除去蛋白酶，添加適量配置好的凍存細胞培養液，用塑料吸管輕輕地吹打使體細胞勻稱，記數，調整凍存液中體細胞的較后相對密度為5牙周106/ml～1牙周107/ml;6.將體細胞分裝進凍存管中，每管1～1.5ml;7.在凍存管上標出體細胞的名字，凍存時間及作業者;8.凍存：標準的凍存程序流程為減溫速度-1～-2℃/min;當溫度達-25℃下列時，可升至-5℃～-10℃/min;到-100℃時，則可快速滲入液態氮中。也可將配有體細胞的凍存管放進-20℃電冰箱2h，隨后放進-70℃電冰箱中留宿，取下凍存管，移進液氮容器內。

細胞凍存注意事項：離心問題：目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養瓶中進行培養，第二天換液。因為離心的目的是兩個，去除DMSO，去除死細胞，這個是標準流程，但對一般人來說，把握不好離心轉速和時間，轉的不夠活細胞沉底的少，細胞就全被扔掉了，轉過了活細胞會受壓過大，死亡。此外在操作過程中容易污染，所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜（DMSO），DMSO對細胞有一定的毒副作用，所以須將離心后的液體前倒凈，且一定倒干凈。我在試驗中按照常規的離心分裝的方法進行復蘇，結果無有異常。無血清細胞凍存液，為多種保護劑組合。

細胞凍存時間和操作步驟：1、首先我們需要凍存培養液，通常細胞凍存液含10%的DMSO，或者是甘油、10-20%的小牛血清；、取對數生長期細胞，并且還需要用PBS進行清洗，需要注意在這里要丟棄掉舊的細胞凍存液；3.去除PBS，加入適量的胰蛋白酶，以覆蓋住培養皿表面為宜，然后把單層生長的細胞消化掉；然后離心1000rpm5min時間；4、去除胰蛋白酶，加入凍存培養液，輕輕吹打使細胞的分布變得均勻，調節細胞較終的密度為5×106/ml-1×107/ml，需要注意這是較佳的細胞密度；5、將細胞裝入凍存管之中，每管的含量應該保持在1～1.5ml之間。在凍存管上標明細名稱、時間、操作者；6、較后要說的就是細胞凍存的時間了，對于標準的凍存程序來說，需要進行梯度降溫，降溫速率-1～-2℃/min，一旦溫度達到-25℃以下時，那么就可增至-5℃～-10℃/min；等到-100℃的時候，可迅速的放入到液氮之中。細胞存儲中對細胞凍存更有特殊要求。溫州石家莊無血清細胞凍存液

無血清細胞凍存液產品性能：傳統的凍存液，一般由胎牛血清、DMSO等組分組成。南京深圳無血清細胞凍存液

永生化的細胞系往往相當健壯，因此，使用實驗室自制的凍存培養基，效果也不錯。典型的配方是在生長培養基中加入5%到10%的DMSO和5%到40%的血清，或只是在血清中加入10%的DMSO。DMSO的作用是取代細胞中的一些水，以防止冰晶形成，刺穿細胞。據賽默飛世爾科技的較深科學家RhondaNewman介紹，DMSO還能防止細胞在冷凍期間發生收縮，而后在解凍時又變得腫脹。血清，這種富含營養成分的物質，直接支持細胞。“當細胞處于這種營養豐富的環境時，它們能夠更好地復蘇。南京深圳無血清細胞凍存液