以前在另一家實驗室的時候，凍存細胞根本就沒有講究這些標準操作。凍存的細胞有293T、PT67、C2C12、MEF(鼠胚胎成纖維細胞）、HelaS3、HelaD、U2OS、HKC、RK3E、ECO、H292、HSY、COS7、SupT1等。將細胞酶消化后直接參與離心，加入凍存液（含90%的血清和10%的DMS0)，直接放在-80℃冰箱。兩三天后移入液氮中，較久保存，幾年后細胞的活力仍沒有什么受損，照常能復蘇，成活率高。但有三點須注意：（1）一是細胞的生長狀態要好，不能長得過稀，同樣也不能過密，細胞的狀態看起來相當健康。70%密度的要保存的細胞須再長24h才能全滿，萬一細胞狀態不好，可以酶消化后再繁殖一次；（2）凍存細胞的量要留心，不能太密也不能太稀，一般1OOmm培養皿的細胞凍存為3~4管；（3）存放在-80℃冰箱的時間不能過長，一兩天后轉移到液氮罐里。我們也曾取出存放在-80℃冰箱的細胞，半年還有30%~50%的細胞有活性，但一年的細胞就沒有活的。即用型產品，4℃可穩定保存。貴陽正規無血清細胞凍存液直銷廠家

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：凍存細胞的效果好壞要看細胞復蘇時的存活率。細胞凍存時，細胞內部會產生晶體，水凝固形成的高濃度溶質會對細胞產生損傷，所以在凍存過程中要盡可能降低晶體的產生。為了提高復蘇存活率，可通過以下方法完成：a）降溫的速度不能太快，讓細胞內的水分緩慢離開細胞；b）在低溫環境下凍存細胞可以降低高濃度鹽對細胞中蛋白質的影響；c）凍存試劑要采用親水的低溫保護劑；d）復蘇時的速度要快，這樣可以減少細胞內部冰晶溶解時產生的某些可溶性成分。寧波正規無血清細胞凍存液廠家供應無血清細胞凍存液：凍存細胞，無需程序降溫。

要折騰嬌貴的細胞寶寶，必須要在無菌超凈環境下才行。超凈工作臺，所有的儀器用品提前滅菌，培養箱什么的定期用酒精擦干凈。微生物污染對細胞的影響經常是開始的時候沒發現，發現的時候已經結束了，所以千萬要小心。除了操作中的各種小細節，還有一個實驗雷區，就是配制細胞凍存液。常見的凍存液配制要遵循培養基+血清+DMSO的成分要求，根據細胞實際判斷成分配比，還建議使用程控儀，注意配制溫度，一個不小心就又會影響細胞的存活效果。學霸君給各位養細胞的科研汪們帶來一款細胞神器——WakoBAMBANKER®即用型無血清細胞凍存液。

無血清細胞凍存液：凍存注意：開蓋之前，用70%的乙醇或異丙醇擦拭瓶身。以下說明適用于在6孔板內的培養物的凍存。培養物應該在適合傳代的時候進行收集和凍存。每管所含有的細胞應當來源于6孔板的1個培養孔。如果使用其他的培養器皿，請相應的調整體積。1.在室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。2.輕輕吸走上清液，注意不要擾動細胞團。3.用血清學吸管以1mL的TBD-698重懸細胞。在打散細胞團時，盡量減少細胞聚集體分解。4.用2mL的血清學吸管將1mL的細胞聚集體轉移到標記好的凍存管中。5.用以下方法凍存細胞聚集體:推薦使用緩速降溫方法，每分鐘降低1度，隨后可以在-196°C液氮長期保存。不推薦在-80°C長期保存。逐步降溫法：-20°C保存2個小時，然后-80°C中保存2個小時，隨后可以在-196°C液氮中長期保存。無血清凍存液特性：復蘇細胞存活率高。

細胞凍存注意事項：1.取細胞的過程中注意帶好防凍手套，護目鏡。此項尤為重要，細胞凍存管可能漏入液氮，解凍時凍存管中的氣溫急劇上升，可導致炸列。2.凍存液的問題：凍存液的配置已是常識，在這里不作詳述，但二甲基亞砜（DMSO）對細胞不是完全無毒副作用，在常溫下，二甲基亞砜對細胞的毒副作較大，因此，必須在1-2min內使凍存液完全融化。如果復蘇溫度太慢，會造成細胞的損傷，二甲基亞砜（DMSO）選擇進口產品。3.離心前須加入少量培養液。細胞解凍后二甲基亞砜濃度較高，注意加入少量培養液可稀釋其濃度，以減少對細胞的損傷。無血清細胞凍存液用途：無血清細胞凍存液用于造血干細胞、間充質干細胞等干細胞的儲存。貴陽正規無血清細胞凍存液哪家便宜

無血清細胞凍存液：一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。貴陽正規無血清細胞凍存液直銷廠家

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、凍存液比例一般是培養基：血清：DMSO=7:2:1或5:4:1；動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養基：血清：DMSO=0:9:1，即直接用血清重懸細胞再加入DMSO，盡管如此，原代細胞的復蘇成活率還是很低。2、有文獻表明，細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙，因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。貴陽正規無血清細胞凍存液直銷廠家