無血清凍存液使用方法:1、收集懸浮細胞或貼壁細胞,離心去除上清培養液。2、加入適量的細胞凍存液,重懸細胞,調節密度至1-5x10*↑/mL。3、將加有凍存液的細胞懸液分裝至凍存管中。4、將凍存管直接轉移至-80C水箱中冷凍保存。5、儲存條件:2-8C保存,年有效:-20C保存,兩年有效。無血清凍存液注意事項:1、請選擇對數生長期細胞進行凍存。2、凍存液加入細胞后,請盡快放入-80C冰箱凍存。3、本產品凍存細胞可以在-80°C冰箱保存3年以上。4、若需長期凍存細胞,請轉移至液氮罐中貯存。5、凍存液中含DMSO成分,為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套。無血清細胞凍存液產品特色:可直接存放于-80℃冰箱凍存,無需經過費時的程序降溫過程(省時、省錢)。貴陽無血清細胞凍存液哪家便宜
細胞凍存及復蘇的基本原則是“慢凍快融”,這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多用二甲基亞砜(DMSO)作為保護劑,這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性;緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外,減少細胞內冰晶的形成,從而減少冰晶對細胞的物理損傷。復蘇細胞采用快速融化的方法可以保證細胞外結晶在很短的時間內融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。血清完全細胞凍存液,通用于各種動物細胞株。特別配方有效提高細胞存活率和活力。不含動物來源性蛋白,能減少各類病毒、霉菌和支原體等污染,確保凍存細胞安全。適合用于無血清培養細胞和蛋白表達細胞。廈門無血清細胞凍存液廠家避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞,同時另一些保護劑不能穿透細胞。
以前在另一家實驗室的時候,凍存細胞根本就沒有講究這些標準操作。凍存的細胞有293T、PT67、C2C12、MEF(鼠胚胎成纖維細胞)、HelaS3、HelaD、U2OS、HKC、RK3E、ECO、H292、HSY、COS7、SupT1等。將細胞酶消化后直接參與離心,加入凍存液(含90%的血清和10%的DMS0),直接放在-80℃冰箱。兩三天后移入液氮中,較久保存,幾年后細胞的活力仍沒有什么受損,照常能復蘇,成活率高。但有三點須注意:(1)一是細胞的生長狀態要好,不能長得過稀,同樣也不能過密,細胞的狀態看起來相當健康。70%密度的要保存的細胞須再長24h才能全滿,萬一細胞狀態不好,可以酶消化后再繁殖一次;(2)凍存細胞的量要留心,不能太密也不能太稀,一般1OOmm培養皿的細胞凍存為3~4管;(3)存放在-80℃冰箱的時間不能過長,一兩天后轉移到液氮罐里。我們也曾取出存放在-80℃冰箱的細胞,半年還有30%~50%的細胞有活性,但一年的細胞就沒有活的。
無血清細胞凍存液與含血清細胞凍存液對比:傳統的細胞凍存液是使用培養基、血清和DMSO按照一定的比例混合,其中DMSO的含量是10%,血清的含量是10%,統稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法,如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘,然后移至-20℃冰箱30分鐘,再移至-80℃冰箱保存16-18個小時(或隔夜),較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。可見,含血清細胞凍存液凍存細胞時遇到的問題:1.凍存細胞時需現配凍存液(如購買市面上通用的含血清細胞凍存液,此步可省略)。2.需要程序降溫(4℃→-20℃→-80℃→液氮),步驟繁瑣,耗時耗力。3.含血清,細胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風險更高。4.血清批次、品質間差異導致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存,且不能原位(如孔板)凍存。當溫度達-25℃以下時,可增至-5 ℃~-10℃/min。之前。
無血清細胞凍存液凍存細胞實驗步驟:選擇凍存處于對數生長期的細胞有助于提高復蘇細胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細胞或貼壁細胞于試管中。2.按照培養細胞密度和所用細胞凍存管的尺寸計算所需凍存細胞數。(參考:5×105至5×106cells/ml)。3.取相當于所需細胞數的細胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無血清型細胞凍存液于離心管中,使細胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細胞混合液。5.將離心管中的細胞混合液分裝于已標示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱,長期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時,可將完全凍結的凍存管(放入-80℃冰箱后至少一晝夜)移至-196℃液氮罐。無血清凍存液特性:適合各種動物細胞。廈門無血清細胞凍存液服務電話
無血清細胞凍存液產品性能:通常細胞凍存液的配方是由胎牛血清加上DMSO組成。貴陽無血清細胞凍存液哪家便宜
細胞凍存注意事項:離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養瓶中進行培養,第二天換液。因為離心的目的是兩個,去除DMSO,去除死細胞,這個是標準流程,但對一般人來說,把握不好離心轉速和時間,轉的不夠活細胞沉底的少,細胞就全被扔掉了,轉過了活細胞會受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗中按照常規的離心分裝的方法進行復蘇,結果無有異常。貴陽無血清細胞凍存液哪家便宜
無血清細胞凍存液,細胞凍存與復蘇后,平均活細胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較,BI無血清凍存液細胞存活率都有較佳的表,BI無血清細胞凍存液也適用于動物血清培養的細胞凍存。復蘇細胞:1.將細胞凍存管由液態氮中取出,置于37度水浴快速溶解回溫。此時可準備培養基、無菌15ml離心管、培養瓶。2.于生物安全柜內,直接以少量培養基反復沖融,使細胞團塊化凍。3.先在無菌15ml離心管中加入5ml培養基,再將化凍的細胞懸液加入離心管中。以200~300g,3分鐘離心收集細胞。4.倒去上清液,以新鮮培養基重懸細胞,移到培養瓶中培養。5.隔天更換新鮮培養基,并觀察細胞存活狀況。細胞凍存管一定要保證完全密...