細胞凍存及復蘇的基本原則是“慢凍快融”，這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多用二甲基亞砜（DMSO）作為保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性；緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少冰晶對細胞的物理損傷。復蘇細胞采用快速融化的方法可以保證細胞外結晶在很短的時間內融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。血清完全細胞凍存液，通用于各種動物細胞株。特別配方有效提高細胞存活率和活力。不含動物來源性蛋白，能減少各類病毒、霉菌和支原體等污染，確保凍存細胞安全。適合用于無血清培養細胞和蛋白表達細胞。無血清凍存液使用方法：將凍存管直接轉移至-80C水箱中冷凍保存。寧波正規無血清細胞凍存液單價

細胞凍存和復蘇的原則：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。細胞凍存液除去蛋白酶，添加適量配置好的凍存細胞培養液.細胞培養的傳代及日常維持過程中，在培養器具、培養液及各種準備工作方面都需大量的耗費，而且細胞一旦開始原代培養，它的各種生物特性都將逐漸發生變化并隨著傳代次數的增加和體外環境條件的變化而不斷有新的變化。廣州正規無血清細胞凍存液生產廠家即用型產品，4℃可穩定保存。

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：DMSO快速稀釋會對細胞造成滲透性損傷，使存活率下降50%。對于DMSO凍存的細胞，復蘇后應緩慢稀釋成細胞懸液：1）凍存液：培養基=1:1稀釋成細胞懸液后離心，然后重懸至培養皿中培養，隔天換液；2）凍存液：培養基=1:10稀釋成細胞懸液，不用離心，直接放置到培養瓶中培養2-4小時后，換液。上述兩種方法都是比較常用的細胞復蘇方法，后者更適用于原代細胞或比較難養的細胞。液氮內的細胞凍存較長時間不要超過半年，凍存在液氮中的細胞應一段時間內進行更替。一個細胞系在培養一個月后，可復蘇一管新的細胞確保其質量沒有發生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。

細胞凍存經驗談:選對凍存培養基才是王道：研究人員經常需要冷凍細胞并保存，以供后續實驗或臨床使用。基本過程相當簡單：慢慢冷凍細胞，將凍存管放入液氮中，并在需要時快速解凍。凍存培養基能支持細胞并防止冰晶形成。不過，Malfavon的體驗告訴我們，使用不同的凍存培養基，結果那可是大不同。一些經驗老道的研究人員自己制備凍存培養基。不過，那些面對脆弱細胞（比如原代和多能細胞）的研究人員，則更喜歡購買標準化的商業產品。一些非常敏感的細胞系也許能從添加物中受益，以避免細胞在解凍時凋亡。無血清凍存液注意事項：請選擇對數生長期細胞進行凍存。

無血清細胞凍存液使用方法：選擇凍存處于對數生長期的細胞有助于提高復蘇細胞存活率。1）按照常用方法收集懸浮細胞或貼壁細胞于試管中。2）按照培養細胞密度和所用細胞凍存管的尺寸計算所需凍存細胞數。（參考：5×105至5×106cells/ml）。3）取相當于所需細胞數的細胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4）加入適量的無血清型細胞凍存液于離心管中，使細胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細胞混合液。5）將離心管中的細胞混合液分裝于已標示完全的冷凍保存管中。6）直接將含細胞混合液的凍存管放入-80℃以下冰箱，長期冷凍保存。度保存的無血清凍存液緩慢加入離心后的細胞沉淀中。徐州無血清細胞凍存液直銷廠家

將分裝好的細胞凍存管，直接置于-80 度冰箱過夜保存。寧波正規無血清細胞凍存液單價

細胞凍存的操作步驟：1.配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養液；2.取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。3.去除PBS，加入適量胰蛋白酶（覆蓋培養皿表面）把單層生長的細胞消化下來；4.離心1000rpm，5min；5.去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節凍存液中細胞的較終密度為5×106/ml～1×107/ml；6.將細胞分裝入凍存管中，每管1～1.5ml；7.在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者；8.凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。寧波正規無血清細胞凍存液單價

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