細胞凍存注意事項:離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養瓶中進行培養,第二天換液。因為離心的目的是兩個,去除DMSO,去除死細胞,這個是標準流程,但對一般人來說,把握不好離心轉速和時間,轉的不夠活細胞沉底的少,細胞就全被扔掉了,轉過了活細胞會受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對細胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗中按照常規的離心分裝的方法進行復蘇,結果無有異常。無血清細胞凍存液使用方法:取相當于所需細胞數的細胞懸浮液量,置于離心管中。南京深圳無血清細胞凍存液
無血清細胞凍存液對比含血清細胞凍存液的優勢:傳統的細胞凍存液是使用培養基、血清和DMSO按照一定的比例混合,其中DMSO的含量是10%,血清的含量是10%,統稱為含血清細胞凍存液。含血清細胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法,如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘,然后移至-20℃冰箱30分鐘,再移至-80℃冰箱保存16-18個小時(或隔夜),較后才移至液氮罐中進行長期的儲存。(其中需要注意的是-20℃條件下不可超過1個小時,以防止冰晶過大,造成細胞大量的死亡。)南京無血清細胞凍存液平均價格無血清凍存液用途:無血清細胞凍存液用于醫院樣本庫細胞樣本保存。
無血清細胞凍存液:采用patent的凍存配方,用包括重組人血白蛋白等多種蛋白組分替代了血清的用途。用包括DMSO在內的復合凍存保護劑替代了單一的DMSO的保護作用。復合保護劑的內部保護劑,易于穿透細胞膜,避免在細胞凍存過程中細胞內部的水分子形成冰晶損傷細胞;外部保護劑,可在溶液形成冰晶之前,在細胞膜外部競爭性的結合細胞膜表面的水分子,從而降低細胞外溶液的電解質濃度,減少陽離子進入細胞的數量。在細胞內部與外部的協同保護作用下,明顯降低了溫度迅速下降與溫度上升對細胞的損害,因此大幅度提高了細胞經過凍存后的復蘇存活率。
細胞凍存的注意事項:1.為保持細胞較大存活率,一般都采用慢凍存融的方法。2.凍存物距液氮面越近溫度越低。標準的低凍速度為-1℃~12℃/分鐘,當溫度下降達-25℃時,下降速度可增至-5~-10℃/分鐘,到-100℃時則可迅速凍入液氮中。因此要適當掌握凍存物下降入液氮中的速度,過快能影響細胞內水分透出,太慢則促冰晶形成。3.初次凍存者在下降凍存時,宜先用細木棒伸入罐中探測液面位置,然后需用溫度計與凍存物并行的辦法,以觀測下降凍存物的速度、凍存物與液氮液面距離和溫度三者關系,當已掌握以上各參數和凍存技術熟練后,光按下降時間和下降距離便可獲理想凍存效果無任何外源蛋白和血清,適用于各類動物細胞株凍存。
無血清快速細胞凍存液凍存細胞復蘇方法:1、從冰箱里取出細胞冷凍保存管,立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2、待凍存管中細胞混合液完全融化后,立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合,再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中,混合均勻。3、離心收集培養細胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4、清洗細胞,充分洗凈殘留凍存液。5、加入適量的新鮮細胞培養基,使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后,將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6、鏡檢后,研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。待凍存管中細胞混合液完全融化后,立即加入1 ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合。長沙無血清細胞凍存液產品介紹
無血清細胞凍存液用途:無血清細胞凍存液用于造血干細胞、間充質干細胞等干細胞的儲存。南京深圳無血清細胞凍存液
細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存,可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來,這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞,可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種,起到了細胞保種的作用。除此之外,還可以利用細胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運送某些細胞。細胞凍存時向培養基中加入保護劑--終濃度5%.15%的甘油或二甲基亞砜(DMSO),可使溶液冰點降低,加之在緩慢凍結條件下,細胞內水分透出,減少了冰晶形成,從而避免細胞損傷。采用"慢凍快融"的方法能較好地保證細胞存活。標準冷凍速度開始為-1到-2℃/min,當溫度低于-25℃時可加速,到-80℃之后可直接投入液氮內(-196℃)。南京深圳無血清細胞凍存液
無血清細胞凍存液,細胞凍存與復蘇后,平均活細胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較,BI無血清凍存液細胞存活率都有較佳的表,BI無血清細胞凍存液也適用于動物血清培養的細胞凍存。復蘇細胞:1.將細胞凍存管由液態氮中取出,置于37度水浴快速溶解回溫。此時可準備培養基、無菌15ml離心管、培養瓶。2.于生物安全柜內,直接以少量培養基反復沖融,使細胞團塊化凍。3.先在無菌15ml離心管中加入5ml培養基,再將化凍的細胞懸液加入離心管中。以200~300g,3分鐘離心收集細胞。4.倒去上清液,以新鮮培養基重懸細胞,移到培養瓶中培養。5.隔天更換新鮮培養基,并觀察細胞存活狀況。細胞凍存管一定要保證完全密...