無血清快速細胞凍存液凍存細胞復蘇方法：1、從冰箱里取出細胞冷凍保存管，立即放入37℃振動水浴槽中快速解凍。2、待凍存管中細胞混合液完全融化后，立即加入1ml細胞培養基于該冷凍管中與細胞混合，再將細胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細胞培養基的試管中，混合均勻。3、離心收集培養細胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4、清洗細胞，充分洗凈殘留凍存液。5、加入適量的新鮮細胞培養基，使用移液管緩緩地均勻細胞混合液。適量地稀釋后，將細胞混合液移至事先準備好的培養瓶中。6、鏡檢后，研究者可根據各自方法和需要來進行細胞培養。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞。徐州天津無血清細胞凍存液

細胞凍存，我們應該注意哪些事項：1、凍存液比例一般是培養基：血清：DMSO=7:2:1或5:4:1；動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養基：血清：DMSO=0:9:1，即直接用血清重懸細胞再加入DMSO，盡管如此，原代細胞的復蘇成活率還是很低。2、有文獻表明，細胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙，因為這一速度可以很好的控制細胞內部晶體的產生。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉入液氮中。深圳無血清細胞凍存液產品介紹凍存液中使用的所有原料均應符合臨床或藥物需求。

細胞凍存秘籍：細胞凍存對于大多數動物細胞，通常每分鐘下降-1至-3℃。控制冷卻過程的較好方法是使用程序降溫系統。如果沒有程序降溫系統，可以使用程序降溫盒，然后將其置于-70℃至-90℃冰箱中過夜。雖然這種方法適用于許多細胞系，但不能提供可控的，均勻的或可重復的冷卻，不建議用于珍貴細胞。無論使用哪種冷卻方法，重要的是快速高效地將其傳輸到較終存儲位置。如果轉移不能立即完成，可以將小瓶置于干冰上一段時間。這樣可以避免在轉移過程中發生溫度升高而損害細胞。在這個轉移過程中溫度升高是解凍后影響細胞活力的主要原因。

無血清細胞凍存液的操作規范：1、培養細胞至對數生長晚期，顯微鏡觀察其外觀、形態、有無污染等。選擇狀態良好的細胞進行凍存操作(注：貼壁生長細胞，用胰蛋白酶消化并用完全培養基終止消化，進行細胞計數;懸浮生長細胞，進行細胞計數)。2、500～1000g離心5min，棄上清。3、加入適量的細胞凍存液，重懸細胞，使細胞濃度達到1～10×106/ml，置于凍存管中密閉。4、采取逐級降溫保存：4℃放置20min，-20℃放置30min，-70℃過夜，置于液氮罐中長期存儲。注意：務必超凈工作臺內無菌操作，避免污染。雜交瘤細胞凍存時應定期復蘇，以檢查細胞的活性和分泌抗體的穩定性。凍存要求發生改變，因為凍存細胞要進行臨床應用。

無血清細胞凍存液與傳統細胞凍存液比較及優勢：1.傳統細胞凍存液只適用于含血清細胞的凍存，但并不適用于無血清培養的細胞，例如一些CIK細胞等，而無血清細胞凍存液即適用于含血清細胞的凍存，又適用于無血清細胞的凍存，是一種通用型細胞凍存液，通用于各種動物細胞株；2.傳統細胞凍存液含10%胎牛血清，因血清是動物源性成份，因此病毒、霉菌和支原體等污染的風險很高，而無血清細胞凍存液因不含血清，只含DMSO、葡萄糖等營養成份，較大降低了動物血清來源病毒、霉菌和支原體等污染的風險，確保凍存細胞的安全；3.傳統細胞凍存液含血清，但動物血清成分復雜，個體差異大，且生產來源不穩定，因此批次間質量常常不穩定，這導致培養細胞的狀態也會受到影響，而無血清細胞凍存液成分和配比明確，批次間差異很小，能夠保證生長細胞狀態的穩定性，細胞存活率高。無血清細胞凍存液的優勢：因不含血清，批次間差異小。廈門長沙無血清細胞凍存液

無血清細胞凍存液產品特色：不含動物源成分，病毒、霉菌和支原體等污染可能性低。徐州天津無血清細胞凍存液

細胞凍存是將細胞放在低溫環境，減少細胞代謝，以便長期儲存的一種技術。細胞凍存是細胞保存的主要方法之一，起到了細胞保種的作用。細胞凍存是細胞保存的主要方法之一，利用凍存技術可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。目前現有技術中，細胞凍存液中的主要成分有10％二甲基亞砜(DMSO)、20％～90％胎牛血清(FBS)、剩余組分為完全培養基。培養基以及FBS可為細胞提供必要的營養物質。DMSO是一種滲透性保護劑，能夠降低細胞冰點，減少冰晶的形成，從而達到降低細胞損傷的保護效果。但FBS屬于動物源性物質，成分比較復雜，在臨床應用上存在潛在的風險，也增加了污染的幾率，并且由于凍存液中含有動物血清，會導致凍存液的成分存在不穩定的因素。徐州天津無血清細胞凍存液