無血清快速細胞凍存液凍存液成分。無血清細胞，無血清干細胞及MSC凍存液。保存條件：儲存于4℃以下。質量保障期從產品的生產日期起，為期3年。3個月以上沒有使用凍存液計劃時，盡可能冷凍保存。為避免重復凍融過程可能導致的凍存液品質下降和性能降低，推薦將100ml產品分裝小瓶后，再存放于4℃以下或-20℃冰箱凍存。無血清細胞凍存液，細胞凍存與復蘇后，平均活細胞回收比例超過80%。與含血清凍存液比較，BI無血清凍存液細胞存活率都有較佳的表，BI無血清細胞凍存液也適用于動物血清培養的細胞凍存。無血清凍存液注意事項：若需長期凍存細胞，請轉移至液氮罐中貯存。鄭州正規無血清細胞凍存液廠家推薦

無血清細胞凍存液，含多種保護劑成分。一些保護劑，易于穿透細胞，避免細胞內部水分子形成冰晶損傷細胞，同時另一些保護劑不能穿透細胞，但可以在冰晶形成之前，優先結合細胞外的水分子，降低細胞外溶液的電解質濃度，減少陽離子進入細胞的數量，為多種保護劑組合，在細胞內外進行雙重保護，較大提高了細胞復蘇存活率。無血清細胞凍存液不含牛血清，無動物源組份。2-8℃即可穩定保存，無需冷凍，即取即用。凍存細胞，無需程序降溫。凍存細胞復蘇率在90%以上。鄭州正規無血清細胞凍存液廠家推薦無血清凍存液使用方法：將加有凍存液的細胞懸液分裝至凍存管中。

細胞凍存注意事項：離心問題：目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養瓶中進行培養，第二天換液。因為離心的目的是兩個，去除DMSO，去除死細胞，這個是標準流程，但對一般人來說，把握不好離心轉速和時間，轉的不夠活細胞沉底的少，細胞就全被扔掉了，轉過了活細胞會受壓過大，死亡。此外在操作過程中容易污染，所以不推薦。另一種說法為細胞懸液中含有二甲基亞砜（DMSO），DMSO對細胞有一定的毒副作用，所以須將離心后的液體前倒凈，且一定倒干凈。我在試驗中按照常規的離心分裝的方法進行復蘇，結果無有異常。

細胞凍存液的配制可選用10%的DMSO加上90%的小牛血清，可以現用現配。除了這個方式，還可選擇20%的DMSO機上80%的小牛血清，配成兩倍的儲存液，在使用時細胞懸液和凍存液按照1:1的比例混勻使用，特別的方便。凍存液可直接置于-20攝氏度的環境中保存。使用細胞凍存液需要注意以下幾點：1、在使用凍存液前，需要確保細胞凍存液已經完全融化，并要輕輕的混勻。對融化后的細胞凍存液要置于4℃的環境中保存。2、使用凍存液之前應該確保凍存前的細胞生長情況比較良好，比如說細胞需要處于對數生長期，并且凍存的時候存活率大于90%。3、在使用細胞凍存液期間，為了保證可以發揮較佳的效果，建議將細胞凍存在液氮之中，這樣可以長時間的進行保存。如果說將細胞置于-80℃的環境下保存，那么保存的時間大約為1年。在冰袋附近操作時，低溫避免保護劑對細胞造成損傷。

細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。細胞凍存的原理：細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融，實驗證明這樣可以較大限度的保存細胞活力。目前細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。無血清細胞凍存液：2-8℃即可穩定保存，無需冷凍，即取即用。寧波無血清細胞凍存液直銷廠家

含血清，細胞污染(細菌、霉菌和支原體等)的風險更高。鄭州正規無血清細胞凍存液廠家推薦

細胞凍存：就凍存細胞而言，為了防止細胞在溫度下降時產生胞內細微冰晶，其溫度的下降不能太快。標準的操作是每一分鐘下降一度。有以下三種建議：（1）優先推薦使用程控降溫儀。（2）其次，加有異丙醇的細胞凍存盒，基本上也可以保證每分鐘1℃左右的降溫速度；（3）還有一些普遍的簡易凍存方法。如4℃半小時，-20℃半小時，然后-80℃過夜，再放入液氮；用泡沫盒（裝15mL離心管的那種）加一個保鮮袋，直接放在-80℃凍存；也可以用紗布做成袋子，將細胞懸掛在液氮上方，隔天轉入液氮；在凍存管外面包上棉花，直接放在-80℃冰箱就能夠達到緩慢降溫的效果；有的時候如果確實比較緊急的話，向96孔凍存盒的內部加滿自來水，再將凍存管放置孔中，直接置于-80℃，這樣也能夠達到緩慢降溫的目的。鄭州正規無血清細胞凍存液廠家推薦