轉染效率：線型PEI(LinePEI,LPEI)與其衍生物用作基因轉染載體的研究比分枝狀PEI(BranchedPEI,BPEI)要早一些，過去的研究認為在不考慮具體條件，LPEI/DNA轉染復合物的細胞毒性較低，有利于細胞定位，因此與BPEI相比應該轉染效率高一些。但較近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的轉染復合物，從而提高轉染效率，但同時細胞毒性也增大。超很高枝的、較柔性的PEI衍生物含有額外的仲胺基和叔胺基，在染實驗中發現這種PEI的毒性低，但轉染效率卻較高。GenEscort是采用各種分枝狀和超很高枝狀的小分子PEI與各種含有生理條件下可降解鍵的交聯劑交聯，合成出的一系列很高枝的可降解的PEI衍生物。聚合物的分枝結構使得其具有較高的正電性，因此易于高效地包裹各種DNA、RNA分子及質粒形成小的納米顆粒，從而提高轉染效率，當所形成復合物進入細胞以后，其中所含的生理條件下可降解的化學鍵在細胞內水解，使交聯聚合物分解為無細胞毒性的小分子PEI，這樣結構的轉染試劑在體外應用可以獲得高的轉染效率和低的細胞毒性，其可降解性對體內應用也具有重要的意義。細胞轉染是完成這一過程的必需步驟。無錫正規細胞高效轉染試劑報價

細胞轉染的注意事項：細胞狀態這點非常重要，不要急于求成，一定要讓細胞處于較佳的生長狀態再做。有文獻說傳代不要超過17代。細胞復蘇后的3代左右時細胞狀態較好，不要用傳了很多代的細胞去做，細胞的形態都會發生變化。大多數已建立的細胞系都是非整倍體，原代培養包括了表達不同基因組合的細胞的混合物。細胞培養在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變，總染色體重組或基因調控變化等而演化。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。如果隨時間發現這種變化，融化一管新鮮的細胞可能會恢復原先的轉染活性。因此，如果觀察到轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。或者，幾種來源于經篩選，轉染效率較高細胞亞系的細胞系現在有售天津細胞高效轉染試劑廠家現貨轉染試劑與細胞不匹配細胞轉染較適合的不是原代細胞。

細胞轉染實驗的方法有哪些：1.脂質體法。中性脂質體是利用脂質膜包裹DNA，借助脂質膜將DNA導入細胞膜內。帶正電的陽離子脂質體則不同，DNA并沒有預先包埋在脂質體中，而是帶負電的DNA自動結合到帶正電的脂質體上，形成DNA-陽離子脂質體復合物，從而吸附到帶負電的細胞膜表面，經過內吞被導入細胞。脂質體法始于1987年，此法的出現使得轉染效率、轉染的穩定性和可重復性較大提高。陽離子脂質體細胞毒性相對較高，對不同的細胞可能會干擾細胞的代謝。2.非脂質體轉染。較新的納米聚合物轉染試劑，如Entranster試劑，納米材料，細胞毒性小，轉染效率高，漸漸成為各大實驗室的選擇轉染試劑。

如何有效提高細胞轉染實驗效率：1.選擇合適的轉染試劑不同細胞系轉染效率通常不同，但細胞系的選擇通常是根據實驗的需要，因此在轉染實驗前應根據實驗要求和細胞特性選擇適合的轉染試劑。每種轉染試劑都會提供一些已經成功轉染的細胞株列表和文獻，通過這些資料可選擇較適合實驗設計的轉染試劑。當然，較適合的是高效、低毒、方便、廉價的轉染試劑。2.保持較佳的細胞狀態一般低的細胞代數（<50）能確保基因型不變。較適合轉染的細胞是經過幾次傳代后達到指數生長期的細胞，細胞生長旺盛，較容易轉染。細胞培養在實驗室中保存數月和數年后會經歷突變，總染色體重組或基因調控變化等而演化。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。也就是說同一種系的細胞株，在各實驗室不同培養條件下，其生物學性狀發生不同程度的改變，導致其轉染特性也發生變化。因此，如果發現轉染效率降低，可以試著轉染新鮮培養的細胞以恢復較佳結果。轉化、轉染、轉導幾個名詞是從事生命科學研究的初學者經常碰到的。

細胞轉染效率低下的幾個大坑：1.試劑過期有時候轉染效率低下，還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當年做轉染整整半年，百思不得其解。較后發現，原來是Lipofectamine2000過期了。換了之后，立馬成功。根據我的經驗，盡量使用開封半年內的，因為過了半年后，就算沒有過失效期，但是細胞毒性較大增加，而轉染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢，影響實驗進度哈。2.未加血清轉染后未及時加入血清，會導致細胞大量死亡。一般要在轉染后的4-6小時換液且換為有血清的培養基。根據毛博的經驗，其實也可以在原來的無血清培養基里面滴加血清。這個時候，較好不要換液，不要打擾細胞，讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清瞬時轉染后，可在48h-72h細胞長滿之后，提取細胞蛋白或者RNA。寧波正規細胞高效轉染試劑報價

瞬時轉染的細胞中，外源基因得以表達但它們并不會整合到細胞的基因組中。無錫正規細胞高效轉染試劑報價

細胞轉染實驗簡介：實驗原理外源基因進入細胞主要有四種方法：電擊法、磷酸鈣法和脂質體介導法和細菌介導法。電擊法是在細胞上短時間暫時性的穿孔讓外源質粒進入;磷酸鈣法和脂質體法是利用不同的載體物質攜帶質粒通過直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因進入細胞;細菌法是利用包裝了外源基因的細菌傳染細胞的方法使得其進入細胞。但是由于電擊法和磷酸鈣法的實驗條件控制較嚴、難度較大;細菌法的前期準備較復雜、而且可能對于細胞有較大影響;所以現在對于很多普通細胞系，一般的瞬時轉染方法多采用脂質體法無錫正規細胞高效轉染試劑報價