穩定轉染細胞系的篩選:生長的細胞比不分裂的細胞更快的受到GENETICIN物品的影響。轉染后,在開始篩選前等待48-72小時,使細胞表達足夠量的抗性酶,保證在開始篩選時可以自我保護。轉染后48-72小時倒掉培養基,加入含有GENETICIN物品的培養基,物品的濃度根據劑量反應曲線確定,足夠殺死未轉染細胞。因為許多因子影響到篩選所需的GENETICIN物品的較佳濃度,包括細胞類型,培養基和血清濃度等,所以有必要對每種細胞作一個劑量反應曲線,確定較佳濃度。篩選較多可能需要一周時間,因為在致死劑量的GENETICIN物品存在條件下,細胞會分裂1-2次。在次培養細胞時使用較低劑量的物品,一般是篩選劑量的一半。篩選后的細胞一般是離散的克隆,根據實驗目的不同,可以分別純化(克隆),收集進行大量培養或染色并進行抗性克隆的計數。這會導致和轉染相關的細胞行為的變化。南京正規細胞高效轉染試劑供應商
瞬時轉染和轉染效率的監測:基因的瞬時表達在24-72小時內就結束了。這種快速的瞬時表達非常適用于驗證質粒表達和監測轉染步驟的效率。可以使用報告基因來確定優化條件,其表達蛋白易檢測,在目的細胞中不含此蛋白或水平很低。常用的報告基因包括氯霉素乙酰轉移酶(CAT),綠色熒光蛋白(GFP),熒光素酶(Lux或Luc)以及b-半乳糖苷酶(b-gal)。可以使用簡單的非同位素方法檢測b-gal的表達以測定轉染效率和活性。pCMVSPORT-bgal質粒包含CMV啟動子調控下的LacZ基因,轉染入真核細胞內后可以直接表達bgal。結合簡單的檢測步驟,可以做為監測轉染條件的一種方便靈敏的方法。徐州細胞高效轉染試劑哪家好在一般實驗室中很難普及。其它物理和化學介導的轉染方法,則各有其特點。
細胞轉染的注意事項:1.細胞鋪板密度用于轉染的較佳細胞密度根據不同的細胞類型或應用而異。因轉染試劑對細胞有毒害作用,細胞太少,容易死。一般轉染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2-4×106細胞/ml,確保轉染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數目的增加可以增加轉染活性和細胞產量。細胞的融合度必須要達到90%才能做啟動子的選擇獲得高轉染活性所需選擇的啟動子依賴于選用的細胞系和要表達的蛋白。CMV啟動子在大多數細胞類型中可以獲得高表達活性。同其他啟動子,如SV40和RSV(勞斯肉瘤細菌)相比,在BHK-21中其活性較高。這三種細菌啟動子在T細胞來源的細胞系,如Jurkat中組成表達水平較低。轉染后在培養基中加入PHA-L和PMA可以啟動Jurkat細胞中CMV啟動子,而單PMA就足以啟動KG1和K562(人骨髓瘤白細胞)中的CMV啟動子。
細胞轉染的注意事項:血清A、DNA-陽離子脂質體復合物形成時不能含血清,因為血清會影響復合物的形成。B、一般細胞對無血清培養可以耐受幾個小時沒問題,轉染用的培養液可以含血清也可以不加,但血清一度曾被認為會降低轉染效率,轉染培養基中加入血清需要對條件進行優化。C、對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用營養豐富的無血清培養基,或者在轉染培養基中使用血清。對血清缺乏比較敏感的貼壁細胞,建議使用**轉染試劑。有條件的話,可以用無血清培養基代替PBS洗細胞兩遍,注意洗的時候要輕,靠邊緣緩緩加入液體,然后不要吹吸細胞而是轉動培養板讓液體滾動在細胞表面。如果洗的太厲害,細胞又損失一部分,加了脂質體后,細胞受影響就更大了,死亡細胞會增多細胞密度以及轉染的時間長短和培養基中血清的含量都是影響轉染效率的重要因素。
轉染的注意事項:用于蛋白生產的細胞的轉染可以在添加有血清或無血清培養基中進行。但更傾向于使用無血清培養基表達蛋白,因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養基一般針對某一特定細胞類型優化并有幾類無血清培養基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養基低得多)。無蛋白培養基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學成分的培養基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應用的一種。在含血清時轉染的細胞可以適應無血清培養基,無蛋白培養基或限定化學成分的培養基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對于已適應無血清或無蛋白培養基的細胞,可以使用其培養基進行轉染。其他一些無血清培養基包含克制陰離子脂質體介導轉染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養基中進行培養和轉染。來指示細胞中目標基因是否存在,這樣的報告基因一般可以在轉染后一兩天內檢測到。深圳正規細胞高效轉染試劑生產廠家
對于貼壁細胞,一般要求在轉染前一日,用胰酶處理為單細胞懸液。南京正規細胞高效轉染試劑供應商
DNA細胞轉染步驟:1.提前現在細胞鋪板提前現在將細胞種植在24孔板中,以轉染時細胞密度在60%左右為宜。2.轉染過程⑴將0.8μg的DNA用25μl無血清稀釋液稀釋,充分混勻,制成DNA稀釋液。注意:無血清稀釋液建議采用OPTI-MEM、無血清DMEM或1640。⑵將2μlEntransterTM-H4000用25μl無血清稀釋液體稀釋,充分混勻,制成EntransterTM-H4000稀釋液。室溫靜置5分鐘。⑶將EntransterTM-H4000稀釋液分別加入到DNA稀釋液中,充分混勻(可用振蕩器振蕩或用加樣器吹吸10次以上),室溫靜置15分鐘。轉染復合物制備完成。⑷將轉染復合物加入到含細胞和完全培養基的培養容器上,輕柔混勻。注意:①對本試劑,采用含血清的全培養基有助于提升轉染效率。南京正規細胞高效轉染試劑供應商
如何有效提高細胞轉染實驗效率:1.選擇高效的轉染方法不同轉染試劑有不同的轉染方法,但大多大同小異。轉染時應跟據具體轉染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養的細胞性質不同,質粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉染效果可能不同,應根據實驗室的具體條件來確定較佳轉染條件。2.確保所構建載體的質量。轉染載體的構建(細菌載體,質粒DNA,RNA,PCR產物,寡核苷酸等)也影響轉染結果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高,但不同細菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細胞周期,如逆轉錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構建外,載體的形態及大小對轉染效率也有不...