原代細胞培養：組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料，較簡單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘，若懸液量大，可適當延長離心時間，但速度不能太高，延時也不能太長，以避免擠壓或機械損傷細胞，離心沉淀用無鈣、鎂PBS洗兩次，用培養基洗一次后，調整適當細胞濃度后再分瓶培養，若選用懸液中某些細胞，常采用離心后的細胞分層液，因為，經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層，這樣可根據需要收獲目的細胞打開蓋子，注意手指不要碰到里面的螺紋。上海鄭州原代細胞分離試劑盒

細胞培養注意事項及常見問題解答：傳代1、貼壁細胞傳代時，先用消化液潤洗一遍；棄掉后，再加入適量消化液置于孵箱或鏡下觀察消化；當細胞變圓，彼此之間產生空隙，加入等量或大量的培養基終止消化，培養基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、這里我沒有明確提到胰蛋白酶的濃度，并不是說濃度越高越好。胰蛋白酶底物的特異性差，會破壞細胞膜成分。PH8.0，37度環境下，消化液的消化能力是較強的。培養基中的血清會降低胰酶的消化能力，所以每次消化前，也要用PBS反復沖洗干凈培養皿。日常用的比較多的消化液濃度：a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。蘇州正規原代細胞分離試劑盒銷售廠家具有體內組織特異性特征并且純度高。

膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現用現配）。胰酶（酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。原代細胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶。

使用RFect系列小核酸轉染試劑做siRNA/miRNA轉染測實驗注意事項：1.細胞接種：一般做轉染前現在接種/鋪板（細胞計數大約5*10^4cell/ml），使做轉染前細胞密度在30-50%；如果細胞是原代細胞，接種密度可以密一些，細胞計數在2*10^6cell/ml；懸浮細胞可以在轉染當天接種/鋪板（細胞計數大約5*10^4cell/ml），待細胞狀態穩定后做轉染前細胞密度30-40%。2.為了能在使用時有較好的轉染效果，靠前次使用建議您用24孔板做，每孔2ul轉染試劑即可。將較佳轉染條件（siRNA與轉染試劑的用量、比例）放大到對應的孔板即可原代內皮細胞和血管平滑肌細胞都需要添加L-谷氨酰胺和成纖維細胞生長因子。

原代細胞培養實驗室常規步驟為：1）將動物組織從機體中取出并消毒除去存留在組織上的細菌、細菌、等污染源，這些污染源將會所需培養的原代細胞凋亡、停止生長和繁殖直至死亡，因此整個原代細胞培養過程中較全在無菌狀態下進行。2）將組織塊在選定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分鐘，通常在37C水浴里進行，而蛋白酶的選定取決于部位組織和所需細胞的類型，比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出單個細胞，但是對于腦組織和乳腺等軟組織，就只能用分解能力較弱的膠原蛋白酶，以免損傷分散出來的單個細胞。3）將分散而成的單個細胞置于合適的培養基（含有特殊細胞生長因子、添加劑以及血清，或者無血清培養基）中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖，整個過程都是在無菌情況下操作貼壁細胞多來自部位組織，而懸浮細胞多來自血液系統的細胞。無錫原代細胞分離試劑盒廠家直銷

以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。上海鄭州原代細胞分離試劑盒

原代細胞的培養是指直接從機體取下細胞、組織和部位后立即進行培養。因此，較為嚴格地說是指成功傳代之前的培養，此時的細胞保持原有細胞的基本性質，如果是正常細胞，仍然保留二倍體數。原代細胞在培養的過程中，也可能產生基因突變而形成無限傳代的細胞株，傳代次數越多，就越有可能變成細胞株（基因缺陷型），因此科學界也通常把靠前代至第十代以內的培養細胞統稱為原代細胞培養。較常用的原代細胞的培養有組織塊培養和分散細胞培養。組織塊培養是將剪碎的組織塊直接移植在培養瓶壁上，加入培養基后進行培養上海鄭州原代細胞分離試劑盒