糖原D-PAS染色液注意事項：1、切片脫蠟應盡量干冷，否則影響染色效果。需使用一張陽性對照片驗證酶的活性。2、過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時溫度以18～22℃較佳。3、試劑(A)、試劑(B)、試劑(C)、應置于4℃密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣，使用前較好提前取出恢復到在室溫后，避光暗處使用。4、酸性乙醇分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據切片厚薄、組織的類別和酸性乙醇分化液的新舊而定，另外分化后自來水沖洗時間應該足夠。5、在過碘酸溶液和SchiffReagent中作用時間非常重要，該依據切片厚薄、組織類別等決定。6、況冶切片染色時間盡量要短。故PAS染色有助于三種急性白血病類型的鑒別。湖南品牌糖原染色試劑盒推薦廠家

糖原及粘液染色法：操作方法：（1）石蠟切片脫蠟至水。（2）0.5%過碘酸水溶液5分鐘。或1%過碘酸95%酒精溶液（過碘酸再結晶應重新配制使用）。（3）蒸餾水洗，70%酒精洗。（4）Schiff氏液15-30分鐘。（Schiff氏液從冰箱取出升至室溫使用）（5）流水沖洗10分鐘。（6）蘇木素浸染細胞核2-3分鐘。（7）脫水、透明、封蓋。結果：糖原呈紅色，細胞核呈藍色。試劑配制：（1）0.5%過碘酸（HIO4）水溶液或70%酒精溶液。（2）Schiff氏試劑。堿性品紅1g蒸餾水200ml1N鹽酸（98.3ml比重1.16鹽酸，加入蒸餾水成1000ml）20ml偏重亞硫酸鈉或鉀1g堿性品紅1g加入200ml蒸餾水，攪拌加熱沸騰，待冷卻至50℃過濾，加入當量鹽酸至25℃時加入偏重亞硫酸鈉。置于暗處，兩天后溶液變桔黃色或草黃色，然后加入少量活性碳并震蕩、過濾，此時溶液應為無色。保存冰箱備用。溶液如顯淺紅色或草黃色，染色效果較差。上海正規糖原染色試劑盒廠家供應糖原染色顯示在肝或心肌細胞內有大量糖原存在即可確診.。

糖原染色試劑盒。含乙二醇基的多糖經過碘酸氧化，產生醛基，與雪夫（Schiff）試劑中無色品紅結合，形成紫紅色沉淀物定位于含糖原的胞漿中。該反應稱為碘酸-雪夫（PAS）反應。（1）雪夫液配制：堿性品紅1g溶于200ml沸水中，冷卻60℃時過濾，加1mmol/L鹽酸20ml，再冷卻至25℃左右，加偏重亞硫酸鈉（Na2S2O5）2g，混合后放棕色瓶中，置暗處24h，無色即可放冰箱中保存，呈微紅色，則加活性炭1～2g，吸附過濾使成無色液體，放冰箱中保存。若溶液變紅，即不能再用。（2）10g/L過碘酸水溶液：過碘酸（HIO4·2H2O）1g,加蒸餾水至10ml。溶解后蓋緊放冰箱備用，一般可用3個月，變黃則失效。

糖原染色的原理與操作方法是什么：（1）原理：過碘酸將血細胞內的糖原氧化，生成醛基。醛基與雪夫液中的無色品紅結合，形成紫色化合物，定位于細胞質中。（2）操作方法：干燥涂片，滴加甲醛固定液固定10分鐘，流水沖洗，晾干。滴加過碘酸溶液作用20分鐘，流水沖洗，晾干。滴加雪夫液作用60分鐘，流水沖洗，晾干。滴加甲基綠溶液復染10分鐘，流水沖洗，晾干鏡檢。細胞的組織化學方法，是研究細胞成分常用的方法之一。它是利用化學試劑與細胞內的某些物質進行化學反應，從而在細胞局部形成有色沉淀物，再通過顯微鏡對組織內的生物化學成分進行定性、定位、定量研究。加入少量活性碳并震蕩、過濾，此時溶液應為無色。

糖原染色是病理學中常規的染色方法之一，McManus在1946年較先使用高碘酸-雪夫技術顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色試劑盒不僅能夠顯示糖原，還能顯示中性黏液性物質和某些酸性物質以及軟骨、垂體、霉菌、色素、淀粉樣物質、基底膜等。過碘酸(又稱高碘酸)是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的1，2-乙二醇基，使之變為二醛，醛不Schiff試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧化細胞內其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于過氧化，這是很關鍵的步驟。生物膜與細胞器的研究。湖南品牌糖原染色試劑盒推薦廠家

冷凍切片染色效果不佳,成熟時間2個月,染色時間一般15-20分鐘。湖南品牌糖原染色試劑盒推薦廠家

PAS技術是很少可檢測不同種類的黏液物質(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技術卻不能區別黏蛋白和糖原。若要冸確鑒別黏液物質(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步驟。大多數情冴下可用α–淀粉酶或麥芽淀粉酶來催化糖原的糖苷鍵水解，形成水溶性的雙糖-麥芽糖，在應用PAS技術之前將糖原從組織切片上除去。人類的唾液被認為是消化糖原的一種有效手段，但是出于安全以及缺乏標冸唾液的考慮，不主張應用唾液。所以網狀纖維的組織化學染色，在臨床病理診斷上占著相當重要的位置。湖南品牌糖原染色試劑盒推薦廠家