轉(zhuǎn)染的注意事項:細胞鋪板密度用于轉(zhuǎn)染的較佳細胞密度根據(jù)不同的細胞類型或應用而異。一般轉(zhuǎn)染時,貼壁細胞密度為70%-90%,懸浮細胞密度為2×106-4×106細胞/ml時效果較好。確保轉(zhuǎn)染時細胞沒有長滿或處于靜止期。因為轉(zhuǎn)染效率對細胞密度很敏感,所以在不同實驗間保持一個基本的傳代步驟很重要。鋪板細胞數(shù)目的增加可以增加轉(zhuǎn)染活性和細胞產(chǎn)量。在三種不同密度進行細胞鋪板的比較表明鋪板密度較高的,CAT活性也較高。得到較高活性所需的LIPOFECTAMINE試劑的量也相應增加了。這些結(jié)果說明,對于轉(zhuǎn)染相同量的DNA所需的較佳陽離子脂質(zhì)體試劑的量會因細胞密度而異。震蕩后將試劑放在-20攝氏度保存,使用前還需震蕩。徐州南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑
轉(zhuǎn)染的注意事項:有血清時的轉(zhuǎn)染血清一度曾被認為會降低轉(zhuǎn)染效率,但只要在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物形成時不含血清,在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。轉(zhuǎn)染過程在兩步中需要使用培養(yǎng)基做為稀釋液:在DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物準備過程以及復合物同細胞接觸過程。在開始準備DNA和陽離子脂質(zhì)體試劑稀釋液時要使用無血清的培養(yǎng)基,因為血清會影響復合物的形成。但在復合物形成后,在加入細胞中前可以加入血清。陽離子脂質(zhì)體和DNA的較佳量在使用血清時會有所不同,因此如果你想在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中加入血清需要對條件進行優(yōu)化。大部分細胞可以在無血清培養(yǎng)基中幾個小時內(nèi)保持健康。對于對血清缺乏比較敏感的細胞,可以使用一些營養(yǎng)豐富的無血清培養(yǎng)基,或者在轉(zhuǎn)染培養(yǎng)基中使用血清。上海細胞高效轉(zhuǎn)染試劑供應商再通過融合或細胞內(nèi)吞進入細胞。
轉(zhuǎn)染的注意事項:用于蛋白生產(chǎn)的細胞的轉(zhuǎn)染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達蛋白,因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養(yǎng)基低得多)。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應用的一種。在含血清時轉(zhuǎn)染的細胞可以適應無血清培養(yǎng)基,無蛋白培養(yǎng)基或限定化學成分的培養(yǎng)基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對于已適應無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細胞,可以使用其培養(yǎng)基進行轉(zhuǎn)染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質(zhì)體介導轉(zhuǎn)染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染。
細胞轉(zhuǎn)染那些事兒:1.選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細胞進行轉(zhuǎn)染。對大多數(shù)細胞而言,均需要在轉(zhuǎn)染當天或前現(xiàn)在鋪板,第二天上午進行轉(zhuǎn)染,48h后收集細胞進行功能檢測。對于原代細胞,可用促有絲分裂刺激物進行細胞活化。2.對于貼壁細胞,一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,用胰酶處理為單細胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,較好在轉(zhuǎn)染前4小時換一次新鮮培養(yǎng)液。3.支原體污染會嚴重降低細胞轉(zhuǎn)染的效率,且支原體不會像細菌污染那么明顯,因而轉(zhuǎn)染前可用環(huán)丙沙星處理細胞以除去支原體。4.細胞轉(zhuǎn)染時需要一定的細胞密度,以70-90%(貼壁細胞)或2×106-4×106細胞/ml(懸浮細胞)為宜。陽離子脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)轉(zhuǎn)染試劑,以其適用宿主范圍廣。
細胞轉(zhuǎn)染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質(zhì)體(Liposome)轉(zhuǎn)染方法原理脂質(zhì)體作為體內(nèi)和體外輸送載體的工具,已經(jīng)研究的十分普遍,中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導入細胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體,DNA并沒有預先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復合物,從而吸附到帶負電的細胞膜表面,經(jīng)過內(nèi)吞被導入細胞。優(yōu)點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復性,它適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細胞中,是目前條件下較方便的轉(zhuǎn)染方法之一。操作簡便,對細胞毒性小,轉(zhuǎn)染效率高受到研究者們的青睞。開封正規(guī)細胞高效轉(zhuǎn)染試劑生產(chǎn)廠家
轉(zhuǎn)染試劑的準備①將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10秒鐘,溶解脂狀物。徐州南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細胞轉(zhuǎn)染效率影響因素:1.細胞密度一般來說,當細胞密度達到60%~80%時進行轉(zhuǎn)染可以取得較高的轉(zhuǎn)染效率,過低或過高都會影響轉(zhuǎn)染效果。2.細胞生長狀態(tài)這點非常關(guān)鍵,很多時候傳代次數(shù)太少或者太多都將導致細胞對轉(zhuǎn)染試劑敏感度的改變。因此,為了提高轉(zhuǎn)染效率以及轉(zhuǎn)染穩(wěn)定性、降低細胞毒性,應盡量使用適度傳代的細胞系,并在不同次實驗時保持細胞傳代次數(shù)的一致性。3.細胞種類不同細胞種類的細胞在做轉(zhuǎn)染時所需要的轉(zhuǎn)染體系是不同的,不能一種體系用在所有類型細胞的轉(zhuǎn)染實驗。徐州南昌細胞高效轉(zhuǎn)染試劑
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如何有效提高細胞轉(zhuǎn)染實驗效率:1.選擇高效的轉(zhuǎn)染方法不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,但大多大同小異。轉(zhuǎn)染時應跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實驗室培養(yǎng)的細胞性質(zhì)不同,質(zhì)粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉(zhuǎn)染效果可能不同,應根據(jù)實驗室的具體條件來確定較佳轉(zhuǎn)染條件。2.確保所構(gòu)建載體的質(zhì)量。轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建(細菌載體,質(zhì)粒DNA,RNA,PCR產(chǎn)物,寡核苷酸等)也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。細菌載體對特定宿主細胞傳染效率較高,但不同細菌載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細胞周期,如逆轉(zhuǎn)錄細菌需侵染分裂期的宿主細胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構(gòu)建外,載體的形態(tài)及大小對轉(zhuǎn)染效率也有不...