外泌體的提取方法：1.超速離心法（差速離心）。超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2.密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。外泌體表面有其特異性標記物，用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合。鄭州外泌體提取試劑銷售廠家

外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。研究發現，外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間，因此，可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結合，原理是先除去非囊泡物質，再通過梯度密度濃縮提取外泌體，該方法可以得到相對較為純凈的外泌體。傳統的梯度密度方法通常需要離心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡，因此，該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足，污染物質可能和外泌體保持在相同的密度層，特別是這個密度范圍又比較寬。合肥正規外泌體提取試劑報價外泌體在免疫中抗原呈遞、一些病癥的生長與遷移、組織損傷的修復等生理病理上起著重要的作用。

專利申請利用分離培養人尿液來源細胞并收集培養基來進行體外培養，直接把外泌體從尿液中沉降下來，無須分離培養人尿液來源細胞并收集培養基。人尿液來源細胞的外泌體的獲取方法，是首先分離培養人尿液來源細胞并收集培養基，將人尿液來源細胞的培養基通過0.22微米濾膜過濾，以去除大的細胞殘片以及其它雜質；然后離心除去細胞器，留取上清；再使用可截留100KD分子量的膜，通過離心截留上清中的外泌體，截留完成后，使用PBS對膜進行洗脫即得到外泌體濃縮液。

外泌體的提取方法，先用含無外泌體血清的培養基對人脂肪來源間充質干細胞進行饑餓培養，這樣可使干細胞處于正常生長狀態，不會被克制生長增殖，其所分泌的外泌體所包含的有效物質也更貼近其自然狀態下的外泌體，然后將含有外泌體的培養上清液進行低速差速離心(即先一離心處理、再第二離心處理)以去除細胞及其碎片，用100kd超濾管對低速差速離心后的離心液進行超濾濃縮得到外泌體濃度更高的超濾液，將超濾液經過第三離心處理去除雜質后直接用0.22μm過濾器過濾除菌，過濾掉粒徑為220nm以上的物質，進一步得到含顆粒粒徑小于220nm的濃縮液，因超濾濃縮處理和第三離心處理使得液體量濃縮，這樣過濾除菌效率得到較大提高，較后將濃縮液進行超速離心的第四離心處理分離提取到外泌體。該外泌體的提取方法，既結合了差速離心，又結合了超濾和超速離心，通過該提取流程，較終可高效地從人脂肪來源間充質干細培養上清液中提取到高濃度、高純度的外泌體，具有操作簡單、成本低，適合產業化生產的特點。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。

密度梯度離心法該方法由于比較繁瑣，用的較少。原理是：像所有的脂質小囊泡一樣，外泌體可以懸浮于特定密度梯度的蔗糖中，其密度范圍1.13g/ml-1.21g/ml，將要分離外泌體的樣本液體置于梯度蔗糖介質上，隨后通過離心將外泌體分離。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。具體步驟是：收集培養2d的上清液。將培養上清液先以1500r/min離心5min除去細胞及碎片,再依次以1000×g離心10min取上清,10000×g離心30min取上清,然后用100ku超濾離心管(Millipore)濃縮至15mL,外泌體提取：可用于收集大于800nm、400nm或200nm的外泌體。開封外泌體提取試劑產品介紹

通過超速離心(120000g/分鐘)20小時以上才能獲得足夠的外泌體量。鄭州外泌體提取試劑銷售廠家

1983年，外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現，1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體，且外泌體天然存在于體液中，包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡，參與細胞間通訊，對外泌體的研究興趣日益增長，無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。如何高效地提取外泌體是實現這項新興液體活檢技術臨床常規化應用的關鍵。鄭州外泌體提取試劑銷售廠家

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