取材的基本要求和注意事項敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養成功，取材時應盡量在4~6h內能制作成細胞，盡快入箱培養，若不能即時培養，應將組織浸泡于培養液內，于4℃存放。若組織塊較大，應在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結締組織后，切碎于培養液內4℃存放，但時間不能超過24h。對于已切碎的組織或血液、淋巴組織應加入含10%二甲基亞砜的培養基，按細胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應嚴格無菌所取標本材料應在無菌條件下進行，為了確保無菌，對所取材料若疑有污染的可能，應將所取組織在含高濃。當細胞向外遷徙出來后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細胞。開封正規原代細胞分離試劑盒廠家直銷

原代細胞培養：組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料，較簡單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘，若懸液量大，可適當延長離心時間，但速度不能太高，延時也不能太長，以避免擠壓或機械損傷細胞，離心沉淀用無鈣、鎂PBS洗兩次，用培養基洗一次后，調整適當細胞濃度后再分瓶培養，若選用懸液中某些細胞，常采用離心后的細胞分層液，因為，經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層，這樣可根據需要收獲目的細胞合肥長沙原代細胞分離試劑盒原代培養的分離細胞在初次接觸體外環境時，它們之間會互相影響。

原代細胞的獲取：酶消化法：所用試劑：膠原酶和胰酶。膠原酶的配制：建議看相關的文獻進行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內預熱（注意現用現配）。胰酶（酶聯合法獲取原代細胞中會加入胰酶，相關文章也蠻多的）膠原酶消化時間：根據組織特性，消化時間會有差異。以小鼠腎細胞為例，加入膠原酶Ⅰ進行消化后，放入37℃培養箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細小，時間可以短一些，30min左右即可）。

原代細胞轉染操作步驟（以24孔培養板為例）：A.細胞接種：轉染前現在接種細胞，每孔500μl培養基（不可加物品），使細胞在轉染時密度在30-50%。B.siRNA-RFectPM混合物準備：1.6pmolsiRNA用50μl無血清培養基稀釋。2.2μlRFectPM用50μl無血清培養基稀釋。輕輕混勻，室溫孵育5min。注意：確保在25min內執行第三步操作，不要過于延遲。3.孵育5min后，將siRNA稀釋液與RFectPM稀釋液混合（總體積100μl）。輕輕混勻，室溫孵育20min。C.將混合物加到培養的細胞內（完全培養基培養）：1.將100μl混合物加入培養孔內，培養孔內含有0.5ml培養的細胞。輕輕晃動培養板，混勻。2.37°C培養18-72h，檢測基因克制效果。如果需要，細胞培養4-6h時可以更換培養基，但不是必須。孵育時間的長短，取決于細胞類型、所干擾基因本身及分析方法。可設置不同的孵育時間進行實驗以確定較佳孵育時間。轉染實驗優化:為了提高轉染效率，較好對轉染條件進行優化，特別是開始使用。給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用。

懸浮型原代細胞：1）必須保持細胞的懸浮狀態。可以通過增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液，以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大，換液時間隔一般較短。原代細胞是出了名的難養，對培養環境和實驗操作的要求更苛刻。寧波正規原代細胞分離試劑盒推薦廠家

以5ml為較低限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。開封正規原代細胞分離試劑盒廠家直銷

細胞傳代的方法都有哪些：根據不同的細胞采取不同的方法。貼壁生長的細胞用消化法傳代；部分貼壁生長的細胞用直接吹打即可傳代；懸浮生長的細胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代，或用自然沉降法吸除上清后，再吹打。原代培養的開始傳代應注意的問題？細胞沒有生長到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前，不要急于傳代；原代培養時細胞多為混雜生長，不同的細胞有不同的消化時間，因此要根據需要注意觀察及時處理，并根據不同細胞對胰蛋白酶的耐受時間而分離和純化所需要的細胞；吹打細胞時動作要輕巧盡可能減少對細胞的損傷；開始傳代時細胞接種數量要多一些，使細胞能盡快適應新環境而利于細胞生存和增值；隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養瓶開封正規原代細胞分離試劑盒廠家直銷