外泌體的提取分離：1、超速離心法（差速離心）。超離法是常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行（如圖所示），可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2、密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續分布的密度階層，是一種區帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。它普遍存在并分布于各種體液中，攜帶和傳遞重要的信號分子。武漢外泌體提取試劑銷售廠家

外泌體（exosome），特指直徑在40-100nm的盤狀囊泡。其主要來源于細胞內內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體，經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。現已證實可以分泌外泌體的細胞有：肥大細胞、淋巴細胞、樹突狀細胞、瘤細胞、間充質干細胞等。外泌體在免疫中抗原呈遞、瘤的生長與遷移、組織損傷的修復等生理病理上起著重要的作用。同時，不同細胞分泌的外泌體具有不用的組成成分和功能，可作為疾病診斷的生物標志物。細胞外囊泡是蛋白質、mRNA、miRNA和脂質運輸來完成細胞間通訊通路的重要媒介，根據它們的大小和發生分為三類，包括外泌體、微泡和凋亡小體。合肥外泌體提取試劑直銷廠家不同細胞分泌的外泌體具有不用的組成成分和功能，可作為疾病診斷的生物標志物。

用于外泌體提取的體液收集注意事項：1、選擇血清還是血漿？推薦大多數研究選擇血漿。血液凝固過程中血小板會產生大量外泌體，含量占血清中外泌體的50%以上，選擇血漿可避免不必要的影響。2、注意抗凝劑的選擇。肝素類抗凝劑與PCR假陰性有關，這可能是因為肝素與引物和/或酶有競爭作用。除了克制PCR，肝素可以與外泌體結合，阻止細胞攝取外泌體。因此需要記錄肝素類藥物的患者的血液樣本。EDTA和雙嘧達莫（CTAD），CTAD可以阻止血小板的并克制其釋放外泌體。EDTA可能會干擾PCR反應（盡管其程度小于肝素），但是還是優于其他選擇。此外，有研究表明鈣螯合劑可在體外促進外泌體與血小板的結合從而降低經EDTA、或檸檬酸鹽處理后的血液樣本中外泌體的表觀數量。使用肝素時這種影響就不會發生，因此建議在測量外泌體的精確數量時選用肝素。但是也有研究表明肝素可以導致體外條件下外泌體的減少。總之，目前尚需要更多的研究論證抗凝劑是否及如何對外泌體的釋放，作用和下游反應產生特異性影響。

這一特性已被應用于開發心血管疾病，神經系統疾病和一些病癥的分子診斷方法，也在肝腎肺相關疾病中進行研發測試。將沉淀物用PBS緩沖液進行懸浮，使外泌體懸浮于液體上層，外泌體與神經退行性疾病：外泌體可能促進或限制大腦中未折疊和異常折疊的蛋白質的聚集。AD病人腦脊液外泌體中均可檢測到Tau和Aβ蛋白。類似的現象也在PD和ALS疾病中發現。PD病人腦脊液外泌體可檢測到α-synuclein，ALS病人外泌體中也可以檢測到SOD1或TDP-43。外泌體與疾病診斷（應用潛能）：外泌體生成機制表明，通過分析外泌體的組分，可以幫助識別其來源的細胞類型。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。

為了分離外泌體，研究人員用兩個這樣的單元串聯構建了一個裝置。首先，使用聲波從血液樣品中除去細胞和血小板。一旦細胞和血小板被去除，樣品進入第二個微流體單元，然后使用較高頻率的聲波將外泌體與稍大的細胞外囊泡分開。這項工作的通訊作者之一，麻省理工學院材料科學與工程系科學家MingDao博士說：“聲波更溫和。而且在分離時，這些囊泡受處理的時間只有1秒鐘或更短。這是一個很大的優勢。”使用該設備，處理100微升未稀釋血液樣本只需要不到25分鐘。“這種新技術可以解決當前外泌體分離技術的缺點，如周期長，一致性差，產量低，污染以及完整性受損等。我們想要把提取高質量的外泌體的過程簡化為按一個按鈕就在10分鐘內獲得所需樣品一樣簡單。”研究人員們說。直接把外泌體從尿液中沉降下來，無須分離培養人尿液來源細胞并收集培養基。武漢正規外泌體提取試劑銷售廠家

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外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。研究發現，外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間，因此，可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結合，原理是先除去非囊泡物質，再通過梯度密度濃縮提取外泌體，該方法可以得到相對較為純凈的外泌體。傳統的梯度密度方法通常需要離心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡，因此，該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足，污染物質可能和外泌體保持在相同的密度層，特別是這個密度范圍又比較寬。武漢外泌體提取試劑銷售廠家